细胞毒（活）性实验：将细胞接种在96 孔板中，每孔1.5×104 个细胞，分别加入不同浓度的荧光探针（0, 2, 5, 10, 15, 20 μM），保持每孔最终体积为100 μL，置于37℃下，培养24 小时之后，每个孔中加入MTT (10 μL, 5mg/mL) 溶液并在37℃下继续培养4小时，用酶联免疫检测仪测定每个孔溶液在490 nm 处的光吸收值，计算细胞成活率。获得荧光探针的毒性和生物相容性信息。 成像实验：细胞首先在含有10% FBS（胎牛血清，fetal bovine serum）、2.0 mM谷氨酰胺、青霉素（100 units/mL）、链霉素（100 units/mL）的DMEM（达尔伯格氏伊戈尔培养基，Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium）溶液中，置于一定湿度的5%二氧化碳混合气体和37℃下的细胞培养箱中进行培养。细胞接种在12孔（1.0×105个/孔）板中。首先，将探针溶液注入到培养皿中培养后，去除培养基并用PBS缓冲溶液冲洗三次，置于激光共聚焦荧光显微镜中进行成像（分别用Ex=356 nm和 Ex=425 nm，观察是否有荧光及拍照）；其次，加入不同浓度的Mg2+离子进行培养，用PBS缓冲溶液冲洗三次后，在激光共聚焦荧光显微镜下改变激发波长观察细胞内荧光成像（分别用Ex=356 nm和 Ex=425 nm，观察是否有荧光及拍照）。(成像实验中镁离子浓度和探针浓度根据细胞毒性实验来确定)